流式细胞术样品制备技术(完整)

流式细胞术样品制备技术流式细胞术对细胞的分析检测必须基于单细胞的基础上，这是流式细胞术的基本要求。因此就必须把实体组织制备成单细胞悬液。在应用FCM技术中，制备出合格的单分散细胞是流式细胞术样本制备技术中重要的一环。它要求这种分散细胞方法既要使细胞成为单个细胞，又能保持细胞的固有生物化学成分及生物学特性。流式细胞术样品制备大致可分为下面五个步骤：①取材：取手术或活检组织必须具有代表性，如取手术肿瘤组织，必须取瘤细胞生长旺盛部位；组织等标本必须在取材后保持样本的新鲜；一般在室温1个小时之内处理好样本或及时用固定剂或低温对组织进行保存；②对细胞的待测生物化学成分进行荧光染色；③按照厂家提供的软件程序对样本进行获取、检测和存储；④再依照软件提供的程序对检测结果进行定量分析；⑤检测分析结果在生物、医学上的意义进行分析和评价。第1节样本单细胞悬液的制备方法一新鲜实体组织样本的制备FCM对单细胞快速进行各种参数分析必须基于单细胞基础上，根据各种组织成分的特点，可选择不同的分散细胞方法，以期达到单细胞产额高、损伤少的目的。尽管标本制备已形成了标准化的程序，但实际操作中总会出现这样或那样的问题。在实体组织分散为单个细胞过程中，解离的方法可能瞬间地或持久地影响细胞的性质、形态、结构、功能等。所以，在对各种不同组织进行分散选择方法时，应尽量减少对细胞的这种影响。目前常用的分散组织细胞的方法有如下3种。（一）酶消化法1作用原理：对实体组织分散的作用原理主要有3方面：①可以破坏组织间的胶原纤维、弹性纤维等；②可以水解组织间的粘多糖等物质；③可以水解组织细胞间的紧密联结装置的蛋白质物质。酶消化法是实体瘤、培养细胞分散为单细胞的主要方法之一。常用的酶类试剂有：蛋白酶类——胃蛋白酶、木瓜蛋白酶、链酶蛋白酶和中性蛋白酶等，都能解离组织中的细胞。胰蛋白酶能水解脂键和肽键；胶原酶能降解几种分子类型的胶原；溶菌酶能水解糖蛋白和肽的糖苷键；弹性蛋白酶能消化连接组织的糖蛋白和弹性蛋白的纤维。不同酶对细胞内和细胞间不同组分有特异作用，可根据分散组织类型来确定使用的酶类。2注意事项：①酶需要溶解于适当的溶液中，而这些溶液不致于造成酶效价降低；②要注意酶的使用浓度和消化时间；③要注意酶活性的PH值。如胃蛋白酶在碱性环境中失去活性，胰蛋白酶在中性溶剂中活性不佳等；④要随时注意影响酶活性的其它因素，如酶的生产批号等。3方法学程序（1）将适合于酶消化的组织置于离心管中；（2）将选好的酶溶液1-2ml加入盛有被消化组织的试管中；（3）一般消化20-30分钟（恒温37℃或室温），消化期间要间断振荡或吹打；（4）终止消化，收集细胞悬液，以300目尼龙网过滤，除去细胞团块，以低速成离心除去细胞碎片；（5）将制备好的单细胞悬液进行进一步荧光染色后上机检测，或保存备用。（二）机械法机械法分散实体组织包括：用手术剪刀剪碎或者用锋利的解剖刀剁碎组织，用匀浆器匀浆，再用细注射针头抽吸细胞或用300目尼龙网滤出单细胞悬液；采用搓网法也能获得大量细胞。机械法易造成细胞碎片和细胞团块，所以机械法常与其它方法配合使用。1剪碎法：①将组织块放入平皿中，加入少量生理盐水；②用剪刀将组织剪至匀浆状；③加入10ml生理盐水；④用吸管吸取组织匀浆，先以100目尼龙网过滤到试管中；⑤离心沉淀1000prm,3-5min，再用生理盐水洗3遍，每次以低速（500-800prm）短时离心沉淀去除细胞碎片；⑥以300目尼龙网滤去细胞团块；⑦细胞用固定液固定或低温保存备用。2网搓法①将100目，300目尼龙网扎在小烧杯上；②把剪碎的的组织放在网上，以眼科镊子轻轻搓组织块，边搓边加生理盐水冲洗，直到将组织搓完；③收集细胞悬液，离心沉淀500-800prm，2分钟；④固定细胞或低温保存备用。3研磨法准备一只70ml研磨器。①先将组织剪成1-2mm3大小组织块；②放入组织研磨器中加入1-2ml生理盐水；③转动研棒，研至匀浆；④加入10ml生理盐水，冲洗研磨器；⑤收集细胞悬液，并经300目尼龙网过滤，离心沉淀500-800prm，1-2min，再以生理盐水洗3遍，离心沉淀；⑥固定或低温保存细胞悬液，备用。（三）化学处理法1作用原理化学处理法是将组织细胞间起粘着作用的钙镁离子置换出来，从而使细胞分散开来。2试剂的配制①0.2%EDTA配制：称EDTA0.2g，加入Hankˊs液100ml，封装高压消毒。置0℃-4℃保存；②胰酶加EDTA配制：胰酶0.25g加PBS（pH7.0）200ml，浓度0.125%，EDTA0.2g加PBS（pH7.0）100ml，浓度0.2%。各取40ml混合，分装置冰箱保存，用时过滤即可使用。3实验方法①将组织切成薄片，置入试管中；②首先加入EDTA液5ml，室温下0.5h，离心弃之；③再加入胰酶-EDTA液5ml。在37℃恒温水浴振荡器内30min；④用300目尼龙网过滤，离心沉淀1000prm，5min。再以生理盐水洗2-3次；⑤细胞固定或低温保存备用。以上几种分散细胞的方法都是目前对实体组织解聚的常用的方法。实验证明，用化学试剂方法处理组织导致细胞成活率低，细胞产额低，细胞碎片和细胞聚集的量不稳定；化学试剂可单独使用，也可与其它方法结合使用；机械法常常造成严重的细胞损伤，单细胞产量低；酶学法、化学法对实体组织的分散解聚较理想，但对所测化学成分有不良影响。所以要根据实验目的去选择合适的单细胞悬液制备方法，才能获得理想的样本和更好的FCM检测结果。（四）注意事项①新鲜组织标本应及时进行处理保存，以免组织在室温下放置时间过长，产生中心组织坏死以及细胞自溶，影响FCM测定结果；②根据实验目的选择最隹的固定方法，以免由于固定剂的原因，造成FCM检测结果的不稳定；③酶学法要注意条件的选择和影响因素，要注意酶的溶剂，消化时间、pH值、浓度等方面对酶消化法的影响。④需注意不同组织，选择相应的方法；如富于细胞的组织——淋巴肉瘤、视神经母细胞瘤、脑瘤、未分化瘤、髓样癌以及一些软组织肉瘤等，就不一定采用酶学法或化学法；往往用单纯的机械法就可以获得大量高质量的单分散细胞；⑤在使用酶学方法时，要重视酶的选用，如含有大量结缔组织的肿瘤——食管癌、乳腺癌、皮肤癌等，选用胶原酶较好，因为胶原酶具有在Ca++、Mg++存在或在血清状态下不发生活性降低的特性。二组织活检、内窥镜取材标本单细胞悬殊液的制备正常组织、瘤组织和淋巴结等活检组织以及内窥镜（胃镜、食管镜等）取材标本，由于材料较少，制备起来比较麻烦。但其制备方法与实体组织基本相似。1取材后立即放入盛少许PBS液青霉素小瓶中；2另取一只小烧杯，杯口用300目尼龙网盖住并用线绳固定好，并用PBS液湿润；取新鲜组织标本置尼龙网上；因标本量较少，尤其是内窥镜取材只少要取3块以上；3在操作前，先将剪刀用PBS液浸润一下，然后开始剪碎组织；4先剪几下，视基本无组织块存在时，用原来装标本的青霉素小瓶中的PBS液，冲洗细胞均浆并过滤于小烧杯中；如果这时仍有可见组织块，再用剪刀剪碎，再加适量该PBS液冲洗，直至网上无组织块为止。这样可尽量多的收集细胞；5细胞加固定液或低温保存，备用。三石蜡包埋组织样本的制备石蜡包埋组织单细胞分散方法的建立，扩大了流式细胞术的应用范围。对大量临床随访资料通过病理包埋组织的流式细胞术分析，可以重新得到深入研究和利用。现将常用的石蜡包埋组织制备单细胞方法介绍如下。1实验方法：①把石蜡包埋组织切成40-50um厚的组织片3-5片，或用乳钵研成0.5mm直径大小颗粒状，放入10ml的试管中；②加入二甲苯5-8ml,在室温下脱蜡1-2天，视石蜡脱净与否，更换1-2次二甲苯，石蜡脱净后，弃去二甲苯；③水化：依次加入100%、95%、70%、50%梯度乙醇5ml，每步为10min，去乙醇，加入蒸馏水3-5ml，10min后弃之；④消化：加入2ml0.5%胰蛋白酶（pH1.5-2.0）消化液，置37℃恒温水浴中消化30min，在消化期间，每隔10min用振荡器振荡1次；⑤消化30min后，立即加生理盐水终止消化；⑥经300目尼龙网过滤，未消化好的组织可做第2次消化；⑦收集细胞悬液，离心沉淀1500prm,再以生理盐水漂洗1-2次，，离心沉淀500-800prm去碎片；⑧保存细胞备用。2注意事项①一定将石蜡从组织中脱干净，一般脱蜡第1遍应在12小时左右，第2遍为30min左右，检测是否将石蜡已脱净的方法:是弃去二甲苯，加入无水乙醇如果无絮状物浮起，即可视为蜡已脱净，反之则蜡尚未脱净；②消化时间不可过长，以免造成已释放出的细胞核被消化；③切片不可过薄或过厚，过薄细胞碎片过多，影响分析结果；过厚造成脱蜡不理想。④消化后的组织应先用眼科剪刀剪碎，然后再加胃蛋白酶消化，30min，37℃，然后用尖吸管吹打成悬液状；⑤消化后的组织悬液经过过滤后可能细胞数很少，这样就要将组织片放在300目尼龙网上，用底部圆滑的试管磨碎，再用PBS液冲洗一下；如此反复，就能得到较多的单细胞悬液。四外周血单个核细胞样本的制备血液是天然的单个细胞分散的细胞悬液，血细胞在生理状态下呈分散的游离状态。它是流式细胞分析的理想样品。血液中的主要细胞成分为白细胞、红细胞和血小板；而其中白细胞主要成分又分为淋巴细胞、单核细胞和粒细胞。但在血细胞中一般检测单个核细胞较为多见。1外周血细胞样本制备方法的选择一般检测细胞大分子成分——DNA、RNA、总蛋白质、个别基因表达蛋白等，多采用淋巴细胞分离液分离法制备单个核细胞悬液。这样可以从血液中分离出单个核细胞——淋巴细胞、单核细胞、幼稚血细胞和肿瘤细胞等。外周血免疫细胞、细胞因子、某些基因蛋白、细胞表面标志检测可采用溶红细胞法。2单个核细胞样品制备程序：①取外周血2ml，肝素抗凝，用生理盐水将血稀释成4ml,混匀；②将稀释后血液沿试管壁徐徐加入4ml淋巴细胞分离液到液面之上，勿用力过大，以免造成血液与分离液混合，保持清晰的分层状态；③离心2000prm,30min,室温18-20℃，离心后可见试管内的血液清楚的分为4层，上层为血浆层，中层为分离液层（单个核细胞所处于血浆层和分离液层中间），底层为红细胞层，红细胞层上为粒细胞层；④用吸管将上层与中层之间的淋巴细胞层吸出收集到另1试管中，用生理盐水洗2遍，每次均以1500prm,10min,弃上清后即得到高纯度的单个核细胞悬液；⑤用适当的固定液固定或置低温冰箱保存待用。五骨髓细胞单细胞悬液的制备1制备方法（1）无菌抽取骨髓液0.5ml；（2）将骨髓标本滴入1000u/ml肝素抗凝的1mlPBS液中；（3）再加入PBS液稀释至10ml；（4）用吸管吸取5ml稀释骨髓液徐徐加入盛有4ml的人类淋巴细胞分离液液面之上；（5）在以上条件下，骨髓有核细胞分层在PBS-人类淋巴细胞分离液之间形成的界面上；（6）吸取有核细胞层，加入到10mlPBS液中，混匀；（7）以1000prm离心5min，弃上清；收集骨髓细胞，加固定液或置低温冰箱备用。2注意事项（1）抽骨髓液时，先将注射器针头、针筒、针栓用肝素浸润，抽取时力量适中；（2）在吸取淋巴细胞层时尽量少吸分离液，量应掌握在300ul左右，这样有利于洗去多余的分层液；（3）红细胞的方法：以等量的蒸馏水加入到沉淀中，轻轻摇动片刻，见粉红色出现，立即加入大量生理盐水，混匀，离心，去除上清即可。六培养细胞的单细胞悬液的制备1培养细胞的特征高质量的单细胞悬液是FCM分析的保证。一般细胞培养分为悬浮培养和贴壁培养，由于细胞的增殖，都有可能形成大小不等的细胞团块或连接成片。如果两个或多个细胞粘连在一块或细胞碎片过多都将影响FCM结果，进而导致实验失败。所以，制备合格的培养细胞单细胞悬液十分重要。2培养细胞样品的制备程序：（1）将培养细胞用0.04%乙二胺四乙酸二钠盐（EDTA2Na）或0.29%胰酶消化3-7min，（根据室温情况而定），至光镜下见到贴壁细胞间出现筛状间隙为止），弃去消化液，加PBS液；（2）用吸管将细胞从瓶壁上轻轻吹打下来，并移入离心管中；（3）短时低速离心，即800-1000prm，5m